WWW.KONFERENCIYA.SELUK.RU

БЕСПЛАТНАЯ ЭЛЕКТРОННАЯ БИБЛИОТЕКА - Конференции, лекции

 

Pages:     | 1 |   ...   | 4 | 5 || 7 |

«АКТУАЛЬНЫЕ ПРОБЛЕМЫ ИНФЕКЦИОННОЙ ПАТОЛОГИИ И БИОТЕХНОЛОГИИ Материалы V-й Всероссийской (с международным участием) студенческой научной конференции 25 – 26 апреля 2012 года Ульяновск – ...»

-- [ Страница 6 ] --

Известно, что при производстве биодизеля образуется глицериновая фракция, содержащая 60–80% глицерина, а также метанол, натриевые или калиевые соли, причем сопутствующие компоненты способны ингибировать рост микроорганизмов [6]. В связи с этим, необходимым является исследование возможности биоконверсии этими штаммами неочищенного глицерина в поверхностно-активные вещества. Для этого моделировали средний состав глицериновой фракции по количеству остаточных спиртов (метанола или этанола) и солей натрия или калия (в виде хлоридов). В дальнейшем такой субстрат называли «неочищенный» глицерин. Показано, что при выращивании A. calcoaceticus К-4 и R. erythropolis ЕК-1 на среде, содержащей глицерин (1%), метанол (0,3%) и КСl или NaСl (2,5%), показатели синтеза ПАВ составляли 112–133% по сравнению с ростом на очищенном глицерине. Так как некоторые технологии производства биодизеля предусматривают использование этанола в процессе этерификации, на следующем этапе метанол заменили этиловым спиртом, что привело к увеличению количества синтезированных ПАВ на 46– 77%. Наши дальнейшие исследования будут посвящены усовершенствованию технологии получения ПАВ A. calcoaceticus К-4 и R. erythropolis ЕК-1 на среде с неочищенным глицерином.

Предложенные подходы могут стать основой для разработки экономически выгодной промышленной технологии получения ПАВ A.

сalcoaceticus К-4 и R. erythropolis ЕК-1, а также решить проблему утилизации отходов производства биодизеля.

1. da Silva G., Mack M., Contiero J. Glycerol: A promising and abundant carbon source for industrial microbiology // Biotechnol. Adv. – 2009. – V.27, № 1. – Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии 2. Banat I., Franzetti A., Gandolfi I., Bestetti G., Martinotti M., Fracchia L., Smyth T., Marchant R. Microbial biosurfactants production, applications and future potential // Appl. Microbiol. Biotechnol. – 2010. – V.87, №2. – р.

3. Пирог Т.П., Шевчук Т.А., Волошина И.Н., Карпенко Е.И. Образование поверхностно–активных веществ при росте штамма Rhodococcus erythropolis ЭК–1 на гидрофильных и гидрофобных субстратах // Прикл.

биохимия и микробиология, 2004. – Т. 40, № 5. – с. 470475.

4. Пирог Т.П., Шевчук Т.А., Карпенко Е.В., Антонюк С.И. Влияние условий культивирования штамма Acinetobacter calcoaceticus К-4 на синтез поверхностно-активных веществ // Прикл. биохимия и микробиология, 2009. – T. 45. №3. – с. 304310.

5. Подгорский В.С., Иутинская Г.А., Пирог Т.П. Интенсификация технологий микробного синтеза. – Киев, «Наукова думка», 2010. – 327 с.

6. Choi W.J., Hartono M.R., Chan W.H., Yeo S.S. Ethanol production from biodiesel-derived crude glycerol by newly isolated Kluyvera cryocrescens // Appl. Microbiol. Biotechnol. – 2011. – V.89, №4. – р. 1255-1264.

SYNTHESIS OF SURFACE-ACTIVE SUBSTANCES OF

ACINETOBACTER CALCOACETICUS К-4 AND RHODOCOCCUS

ERYTHROPOLIS ЕК-1 ON THE GLYCEROL

The proposed approaches such as use of glycerol as a cheap substrate and adding of exogenous precursors of biosynthesis may be the basis for the development of economically beneficial industrial technologies of producing of SAS of A.

calcoaceticus К-4 and R. erythropolis ЕК-1.

Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии

ПРОБЛЕМЫ ЭПИЗООТОЛОГИИ И ЭПИДЕМИОЛОГИИ

УДК

КЛИНИКО-ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ

БОЛЕЗНИ ЛАЙМА У СОБАК

Адушкина О.М., 4 курс, факультет ветеринарной медицины Научный руководитель: к.б.н., ст. преподаватель Журавская Н.П.

Болезнь Лайма (БЛ) – инфекционное трансмиссивное природноочаговое заболевание, имеющее системный характер поражения и стадийное течение.

Заболевание переносится клещами семейства Ixodidae и вызывается спирохетами рода Borrelia.

В настоящее время это наиболее распространенное, переносимое клещами заболевание в США и Европе. Официальная регистрация случаев болезни Лайма у людей в нашей стране введена в 1992 году. И в настоящее время это заболевание остается малоизвестным для практического здравоохранения. На территории СНГ болезнь Лайма регистрируется повсеместно – от побережья Балтийского моря до Тихого океана, и поэтому, этот регион является наиболее протяженным нозологическим районом Лайминфекции в мире [3, 7].

Человек заражается в природных очагах болезни Лайма. Передача инфекции осуществляется трансмиссивным путем при укусе клеща (инокуляция), хотя не исключается возможность инфицирования и при попадании фекалий клеща на кожу, с последующим их втиранием при расчесах (контаминация). В случае разрыва клеща, при неправильном удалении, возбудитель может попасть в рану.

Природные очаги болезни Лайма обнаруживают, главным образом, в лесных ландшафтах умеренного климатического пояса. В последние годы установлено, что область распространения БЛ совпадает с клещевым энцефалитом, и заболевание регистрируется на всей территории Российской Федерации. Однако заболеваемость болезнью Лайма в 2-4 раза выше, чем клещевым энцефалитом, и занимает одно из первых мест среди природноочаговых зоонозов [1, 2].

Следует отметить, что диагностика болезни Лайма у животных в нашей стране не проводилась, хотя, как показали исследования Чикагского университета, собаки оказались более восприимчивы к данному заболеванию, чем люди.



Исследование сывороток собак методами ИФА и ЛИФА подтверждает наличие данной болезни у животных на территории нашей страны [3, 5].

Возбудителем болезни Лайма является грамотрицательная спирохета, относящаяся к роду Borrelia, семейства Spirochaetaceae, вид Borrelia burgdorferi sensulato с тремя подвидами: В. burgdorferi, В. garinii, В. afzelii. Развитие инфекции в организме животного зависит от многих факторов, включающих:

Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии вирулентность штамма В. bugdorferi, вид переносчика, состояние иммунной системы (клеточный и гуморальный иммунитет) животного и др.

В тело хозяина (собаки или любого другого животного) боррелия попадает вместе со слюной клеща. Попав в кожу, спирохеты начинают активно размножаться. Клинически это проявляется в виде эритемы (мигрирующая эритема). После размножения, вместе с током крови, спирохеты разносятся по всему организму, заселяя различные ткани и органы: почки, печень, сердце. В эксперименте, при инкубации клеток головного мозга, спинного мозга и клеток эндотелия сосудов с культурой [1, 4].

B. burgdorferi был установлен цитопатический эффект. В. burgdorferi обладает также адгезивными свойствами. Прикрепляясь к эндотелию сосудов, она беспрепятственно проходит через межклеточное пространство, преодолевая гематэнцефалический барьер.

Эти свойства боррелии обеспечивают беспрепятственное распространение в организме и развитие клинических признаков [2, 3].

Доминирующим клиническим признаком у собак является хромота.

Первые признаки хромоты обычно появляются между 2-5 месяцем после укуса клеща. Чаще поражается сустав (как правило, со стороны укуса клеща):

локтевой, карпальный, коленный, скакательный (могут и другие), реже два и более. Течение хромоты эпизодическое. Время продолжения каждого периода 2-4 дня, а между ними в среднем 11 месяцев. Незадолго до появления хромоты поднимается температура тела до 39,5-40°С и держится 1 -2 суток. Вместе с этими признаками появляется депрессия, вялость, отсутствие аппетита и незначительная потеря веса. При пальпации пораженных суставов отмечается повышение местной температуры и незначительная припухлость.

Цитологическое изучение синовиальной жидкости показало высокое содержание в ней лейкоцитов (46300 клеток/мкл), из которых 85% нейтрофилы.

Поздние эпизоды артритов могут продолжаться несколько месяцев и переходить в хроническую форму, что служит причиной эрозии суставных поверхностей. Описаны случаи ревматического артрита, связанного с болезнью Лайма. Повреждения почек, связанные с В. burgdorferi, включают следующие гистологические изменения: нефродистрофия, нефросклероз, перикапсулярный фиброз. Иногда отмечается локальный некроз [2, 6, 7].

В настоящее время серологические методы для обнаружения антител к В.

burgdorferi являются наиболее надежными в лабораторной диагностике болезни Лайма.

Для лечения болезни Лайма широко применяют противомикробные препараты следующих групп.

1. Препараты группы пенициллина: бензилпенициллина натриевая соль, бициллин-1, ампициллин, ампиокс.

2. Антибиотики группы цефалоспоринов: клафоран, цефуроксим, 3. Тетрациклины: тетрациклин, доксициклина гидрохлорид, окситетрациклина гидрохлорид.

Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии При возникновении побочных симптомов (Конъюнктивит, ринит) применяют симптоматическую терапию.

За рубежом (США, Германия и др.) разработана вакцина для людей и животных. Это искусственно синтезированный поверхностный белок OspA. В нашей стране методы специфической профилактики не разработаны.

1. Крючечников В. Н. и др. Системный клещевой боррелииоз. (Болезнь Лайма). - М., 1977, библиогр.

2. http://vets.al.ru 3. www.zootovary.com 4. http://www.allvet.ru 5. http://zooclub.ru 6. http://www.veterinarka.ru/ 7. http://medportal.ru

CLINICAL FEATURES EPIZOOTOLOGICAL LYME

DISEASE IN DOGS

This article contains information about the methods of diagnosis and treatment of Lyme disease in dogs.

УДК

ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ РАСПРОСТРАНЕНИЯ

АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ

Беляева Е.А., Ивашина М.М., 4 курс, факультет ветеринарной медицины Научный руководитель: к.б.н., ст. преподаватель Журавская Н.П.

Африканская чума (лат. – Pestis africana suum; англ. – African swine fever;

болезнь Монтгомери, восточно-африканская лихорадка) – особо опасная высококонтагиозная болезнь свиней, характеризующаяся лихорадкой, обширными геморрагиями и цианозом кожи, тяжелыми дистрофическими и некротическими поражениями клеток ретикулоэндотелиальной системы, внутренних органов и высокой летальностью.

Первые сообщения о болезни были сделаны Хатченом и Стокменом (1903), Греем (1904) и Тейлором (1905).Они наблюдали на некоторых фермах Африки болезнь среди домашних свиней, по клиническим и патологоанатомическим признакам напоминающую чуму. Однако она протекала более остро и заканчивалась гибелью всех заболевших свиней.

Длительное время африканская чума регистрировалась только в государствах Африки, но с 1957 г. она появилась в странах Европы, на Кубе и в Бразилии. Благодаря проведению жестких мер заболевание было ликвидировано. На территории России болезнь не регистрировалась.





Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии В настоящее время многие африканские страны являются стационарно неблагополучными по этой чрезвычайно опасной болезни и представляют опасность для других стран.

Африканская чума наносит огромный ущерб, который складывается из затрат на ликвидацию (уничтожение) всех свиней неблагополучной территории и проведение дорогостоящих ветеринарно-санитарных и карантинных мероприятий.

Возбудитель африканской чумы свиней– ДНК-содержащий вирус семейства Asfarviridae, рода Asfivirus; Характеризуется выраженной вариабельностью вирулентных свойств, установлено несколько сероиммуно- и генотипов вируса, что представляет собой основное препятствие в разработке средств специфической профилактики (вакцин, гипериммунных сывороток [1, 2].

В естественных условиях к африканской чуме свиней восприимчивы домашние и дикие свиньи всех возрастов. Источник возбудителя инфекции – больные животные и вирусоносители. Заражение здоровых свиней происходит при совместном содержании с инфицированными вирусоносителями. Факторы передачи возбудителя – корм, пастбища, транспортные средства, загрязннные выделениями больных животных. Использование в корм необезвреженных столовых отходов способствует распространению возбудителя. Механическими переносчиками вируса могут быть птицы, люди, домашние и дикие животные, грызуны, накожные паразиты (некоторые виды клещей, зоофильные мухи, вши), бывшие в контакте с больными и павшими свиньями. Резервуарами вируса в природе являются африканские дикие свиньи и клещи рода орнитодорос.

Болеют домашние свиньи всех пород и возрастов независимо от сезона года, а также дикие африканские свиньи (бородавочники, кустарниковые, лесные) и кабаны. Установлено, что вспышки болезни у домашних свиней регистрировались во всех зонах, в которых обитали дикие африканские свиньи.

Животные других видов, а также человек невосприимчивы к вирусу. У диких африканских свиней болезнь протекает субклинически.

Основными источниками возбудителя служат больные животные и вирусоносители, от которых заражаются клещи. Из организма этих животных вирус в больших количествах выделяется с фекалиями и мочой, слюной, секретом конъюнктивы, загрязняя окружающую среду [3].

Инкубационный период заболевания зависит от количества поступивших в организм микроорганизмов, состояния животного, тяжести течения и может продолжаться от 2 до 6 суток. Течение подразделяют на молниеносное, острое, подострое и реже хроническое. При молниеносном течении животные гибнут без каких-либо признаков; при остром – у животных повышается температура тела до 40,5-42,0°C, отмечаются одышка, кашель, появляются приступы рвоты, парезы и параличи задних конечностей. Наблюдаются серозные или слизистогнойные выделения из носа и глаз, иногда понос с кровью, чаще запор. Больные животные больше лежат, зарывшись в подстилку, вяло поднимаются, передвигаются и быстро устают, усилена жажда. На нежных участках кожи Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии могут появиться пустулы, на месте которых образуются струпья и язвы.

Супоросные больные матки абортируют. Смертность, в зависимости от течения, может достигать от 50 до 100%. Переболевшие и оставшиеся в живых животные становятся пожизненными вирусоносителями.

Латентное течение характерно для естественных носителей вируса – бородавочников, лесных и кустарниковых свиней и отдельных домашних свиней. Клинически болезнь не проявляется, но у таких животных периодически развивается вирусемия с вирусовыделением [4, 5].

Диагноз ставят на основании эпизоотологических, клинических, патологоанатомических данных, лабораторных исследований и биопробы.

Африканскую чуму свиней необходимо дифференцировать от классической чумы свиней. Наиболее наджный метод диагностики – реакция гемадсорбции, метод флуоресцирующих антител и биопроба на свиньях, иммунных к классической чуме.

Диагноз устанавливают комплексно. В связи с тем, что африканская чума свиней по клиническим и патологоанатомическим признакам имеет сходство с классической чумой, то основанием для подозрения на нее является заболевание свиней, вакцинированных против чумы. При этом учитывают эпизоотологические данные.

Окончательный диагноз устанавливают заражением подозрительным материалом (кровь, суспензия селезенки и лимфатических узлов) свиней, вакцинированных против классической чумы. Заражение свиней (биопробу) проводят в специализированной лаборатории с соблюдением особых мер предосторожности. В дальнейшем при подтверждении диагноза текущую диагностику осуществляют лабораторными методами (РГАд и цитолиз в культурах клеток, РИФ, ПЦР и др.). Серологические типы вируса определяют в РП, РСК, РЗГАд и другими методами.

Африканскую чуму следует дифференцировать в первую очередь от классической чумы, а также от рожи и пастереллеза при помощи соответствующих бактериологических исследований [6].

Для профилактики заболевания необходимо соблюдать следующие ветеринарно-санитарные правила содержания животных:

обеспечить безвыгульное содержание свиней всех возрастов;

исключить доступ посторонних людей и животных в места содержания содержать помещения для животных в чистоте и регулярно проводить дезинфекцию и уничтожение клещей и других кровососущих насекомых используемые корма и пищевые отходы перед скармливанием подвергать термической обработке (кипячению в течение 2-х часов);

обеспечить постоянное наблюдение за клиническим состоянием животных и во всех случаях внезапного массового заболевания или падежа животных немедленно извещать городскую ветеринарную Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии Все случи купли-продажи, перевозки, забоя животных проводить по обязательному согласованию с сотрудниками госветслужбы города.

1. Алтухов Н.Н. Краткий справочник ветеринарного врача. – М.:

«Агропромиздат», 1990. – 574с 2. Бакулов, И.А. Проблемы современной эволюции африканской чумы свиней / И.А.Бакулов, В.В.Макаров // Вестник с.-х. науки. – 1990. – №3. – 3. Гавриш В.Г. Справочник ветеринарного врача. – Ростов-на-Дону:

«Феникс», 2003. - 576с.

4. Инфекционные болезни животных / Б.Ф. Бессарабов, Е.С. Воронин и др.;

под ред. А.А. Сидорчука. – М.: Колосс, 2007. – 671 с 5. Макаров В.В. Комментарий к современной ситуации по АЧС Ветеринарный консультант.– 2007.– №12.– С.4–6.

6. Справочник ветеринарного врача / А.Ф. Кузнецов. – Москва: «Лань», 7. Справочник ветеринарного врача/ П.П. Достоевский, Н.А. Судаков, В.А., Атамась и др. – К.: Урожай, 1990. – 784с.

EXTENDED FEATURES EPIZOOTOLOGICAL

AFRICAN SWINE FEVER

This article contains information about the prevalence, clinical features and methods of diagnosis of African swine fever.

УДК 619:

КИШЕЧНЫЕ ИНФЕКЦИИ, ВЫЗЫВАЕМЫЕ ЭНТЕРО-ПАТОГЕННЫМИ

Воротников А., 1 курс, факультет ветеринарной медицины Руководитель: Молофеева Н.И., Васильев Д.А.

Бактерии рода Е.coli являются наиболее распространенными возбудителями инфекционных заболеваний желудочно-кишечного тракта у человека. Повышенный интерес в мире, проявляемый в настоящее время к проблеме ЭГКП Е.coli О157 объясняется как новизной данного возбудителя так и его клинико-эпидемиологическим значением. Ведущим фактором патогенности является шиго-подобный токсин, который сопровождает развитие геморрагического колита (т.е. кровавую диарею) и гемолитического уремического синдрома (ГУС), для которого характерны острая почечная недостаточность, гемолитическая анемия и тромбоцитопения. Доля инфекций, которые приводят к развитию ГУС, составляет 3 – 7 % в спорадических случаях заболевания и 20 % и более в случае вспышек. У 25 % пациентов ГУС может привести к неврологическим осложнениям (конвульсии, инсульт и кома), Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии примерно у 50 % выживших пациентов может привести к хроническим заболеваниям почек. Коэффициент летальности ГУС от 3 до 5 %.

По статистике в Германии по поводу кишечной инфекции, которая осложняется развитием гемолитико-уремического синдрома – болезни, которая по статистике имеет летальность до 50%. По статистике ОКИ, обусловленные КП О157 имеют повсеместное распространение, поскольку официально зарегистрированы во многих странах Северной и южной Америки, Европы, Азии и Африки. По литературным данным в США ежегодно переносят ОКИ, вызванную КП О157, около 20000 человек, из которых 250 человек умирают. Впервые в нашей стране изучение кишечных инфекций, осложненных ГУС, началось с расследования вспышки в марте 1994 года в Тульской области.21 штамм из 25 нетипируемых были отнесены к E.coli О157, выделенных от 17 лиц, больных с диагнозом острых кишечных инфекций ГУС.

В 1998 г было выделено еще 3 штамма. Официально в нашей стране данный возбудитель не регистрируется, видимо это связано со сложностью бактериологической диагностики, обусловленной КП О157 (данный возбудитель не растет на обычных питательных средах). Основным резервуаром EHEC является крупный и мелкий рогатый скот. Однако такие домашние животные, как свиньи, лошади, олени, птицы, собаки и кошки так же могут быть носителями.

При проведении мониторинга E.coli О157 среди сельскохозяйственных животных в Европе обнаружено, что в Германии около 20,8 % животных и 2, % исследованных проб мяса крупного рогатого скота были заражены Е.coli О157:H7. При исследовании образцов мяса в Финляндии, данный показатель составил 1,4 %, а в Бельгии – 1,26 %. При проведении мониторинга серовара О157 в хозяйствах Рязанской, Воронежской, Тульской и Орловской областей обнаружено, что носительство среди КРС составляет 2,6 %, среди свиней 0,9 % и птиц – 0,8 %.

Впервые в нашей стране изучение острых кишечных инфекций, осложненных гемолитическим уремическим синдромом, началось с расследования вспышки, произошедшей в феврале – марте 1994 года в Тульской области, с числом заболевших 28 детей от 2 месяцев до 6 лет.

Спорадические случаи заболевания в области отмечались и ранее. Однако бактериологические исследования не позволяли идентифицировать возбудитель.

Бльшая часть имеющейся в ВОЗ информации относится к серотипу O157. Он передается человеку, главным образом, в результате употребления пищевых продуктов животного происхождения, контаминированных эшерихиями в процессе убоя, переработки, упаковки, хранения и приготовления пищи, таких как сырые или не прошедшие достаточную тепловую обработку мясные продукты и сырое молоко.. А также при употреблении, фруктов и овощей, обсеменение которых происходит в результате контакта с фекалиями домашних и диких животных на какой-либо стадии их выращивания или обработки.

Развитию методов лабораторной диагностики уделяется большое Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии внимание, поскольку ее эффективность является одним из важнейших условий оперативного контроля за эпидемиологической и эпизоотологической ситуацией и успешности противоэпидемических и противоэпизоотических мероприятий.

Первоначально для выделения энтерогеморрагических E.coli О использовали в качестве дифференциального маркера их свойства замедленно ферментировать сорбит.

Для микробиологической практики отечественными и зарубежными учеными разработаны питательные среды для выделения указанной серогруппы эшерихий. использовали в качестве дифференциального маркера E.coli О157 их свойства замедленно ферментировать сорбит. Но метод их выделения и идентификации с использованием предлагаемых сред сравнительно трудоемок, недостаточно чувствителен и требует много времени (4-5 суток).

Современные методы иммунодиагностики (ИФА), предлагаемые для индикации этих бактерий, хотя и являются высокоспецифичными и чувствительными, но сложность методик, высокая стоимость оборудования и реактивов для постановки этих реакций делает их пока недоступными для большинства лабораторий. Поэтому перед исследователями стоит задача изыскания более простых и доступных для любых лабораторий методов индикации и идентификации названных микроорганизмов.

В лабораторной практике для ускоренной индикации патогенных для человека микроорганизмов в пищевых продуктах, а также для их быстрого типирования, предложены индикаторные бактериофаги.

Методы фагодиагностики просты в постановке, специфичны, не требуют больших затрат времени, материалов и общедоступны.

Роль бактериофага для лабораторной диагностики ряда инфекции не только не утратил, а, наоборот, начал привлекать к себе вс более пристальное внимание исследователей. С каждым годом повышается значимость бактериофагов как высоко специфического диагностического средства, позволяющего наджно дифференцировать возбудителей бактериальных видов, а порой проводить более детальную дифференциацию отдельных типов и вариантов внутри данного вида. Возможность фагоидентификации вытекает из специфичности действия фагов, которая может быть настолько выражена, что позволяет дифференцировать не только отдельные виды, но и серологически неотличимые штаммы в пределах одного вида.

1. Тугаринов О.А., М.К.Пирожков, Ю.А.Малахов Сборник научных трудов.

– М.:ВГНКИ. – 2001. - Т.62. - С.68-75.

2. Энтеробактерии / Под ред. Голубевой И.В., Килессо В.А., Киселевой Б.С.

и др. – М., – 1985. – С. 57-87.

3. Mead P.S., Griffin P.M. Escherichia coli O157:H7 // Lancet. - 1998. - Vol.

352. – P. 1207-1212.

Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии

THE PROBLEM OF INTESTINAL INFECTIONS CAUSED BY

ENTEROPATHOGENIC STRAINS OF E.COLI BACTERIA O

Vorotnikov A., Molofeeva N.I., Vasiliev.D.A Enteropathogenic E.coli 0157 bacteria of the genus are the causative agents of infections that lead to the development gemolntiko-uremic syndrome. For rapid identification and display are encouraged to use specific bacteriophages.

УДК 579.

МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЙ ПРОИЗВОДСТВЕННЫЙ КОНТРОЛЬ В

СЕЦИАЛИЗИРОВАННОМ МЕДИЦИНСКОМ УЧРЕЖДЕНИИ

Научный руководитель: д.м.н., профессор Нафеев А.А.

ФГБОУ ВПО «Ульяновский государственный университет»

Производственный контроль – контроль за соблюдением нормативных документов и выполнением санитарно противоэпидемических (профилактических) мероприятий. Объектами производственного контроля являются производственные, медицинские, общественные помещения, здания и сооружения и т.д. Производственный контроль в общем случае включает в себя: 1) осуществление (организацию) лабораторно-инструментальных исследований и испытаний сырья, полуфабрикатов, готовой продукции и технологий производства, условий хранения, транспортировки, реализации и утилизации; 2) очистку и дезинфекцию систем вентиляции; 3) организацию медицинских осмотров, профессиональной гигиенической подготовки и аттестации должностных лиц и работников организаций, деятельность которых связана с производством, хранением, транспортировкой и реализацией пищевых продуктов и питьевой воды, воспитанием и обучением детей, коммунальным и бытовым обслуживанием населения; 4) контроль за наличием сертификатов, санитарно – эпидемиологических заключений, личных медицинских книжек, документов, подтверждающих качество, безопасность сырья, полуфабрикатов, готовой продукции и технологий их производства, хранения, транспортировки, реализации и утилизации в случаях, предусмотренных действующим законодательством; 5) своевременное информирование населения, органов местного самоуправления, органов и учреждений государственной санитарно – эпидемиологической службы Российской Федерации об аварийных ситуациях, остановках производства, о нарушениях технологических процессов, создающих угрозу санитарно – эпидемиологическому благополучию населения. В медицинском учреждении составляется Программа производственного контроля и План е выполнения на календарный год. Программа микробиологического контроля (мониторинга) окружающей среды должна охватывать: оценку бактериальной контаминации воздуха (КОЕ/куб. м.); оценку бактериальной контаминации критических поверхностей, рук и одежды персонала; оценку эффективности очистки и дезинфекции помещений и оборудования; тестирование активности Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии действующих веществ дезинфектантов; оценку эффективности работы стерилизующих воздушных фильтров; оценку качества стерилизации. Текущий контроль в принципе не может и не должен выявлять или подсчитывать все возможные микроорганизмы, присутствующие в контролируемой среде. Он может только показать, что все ключевые системы, контролирующие состояние производственной среды, работают в соответствии с установленными требованиями и допустимые лимиты бактериальной нагрузки не превышены.

Задачей микробиологического контроля является получение репрезентативной оценки бактериальной нагрузки производственной среды.

Общие принципы процедуры микробиологического мониторинга: при контроле используются только откалиброванное оборудование и приборы, прошедшие метрологическую аттестацию; любой метод, выбранный для текущего контроля должен предварительно пройти валидацию; при текущем мониторинге предпочтительно использовать те же методы, что и при первичной аттестации чистого помещения или зоны - любые изменения методов контроля могут повлиять на результаты; ростовые свойства питательных сред, используемых для микробиологических исследований, должны подтверждаться использованием соответствующих штаммов микроорганизмов; в инструкциях, описывающих процедуру микробиологического мониторинга, следует четко излагать шаг за шагом последовательность проведения исследований; полученные результаты должны регистрироваться в утвержденных по форме протоколах (журналах);

персонал, выполняющий программу микробиологического мониторинга должен быть компетентен в соответствующих научных дисциплинах, адекватно обучен и иметь необходимые полномочия.

Таблица 1 – Результаты производственного контроля 2009-2011 гг. в ГУЗ «Областной клинический кожно-венерологический диспансер»

п/п Наименование поликлиника/ поликлиника/ поликлиника/ Дистиллирован- -/12/ Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии Процедуры микробиологического мониторинга обычно включают следующие шаги: выделения микроорганизмов из производственной среды (на агаровую поверхность, в питательный бульон или жидкость, на мембрану фильтра); посев, если требуется, на питательную среду и культивирование; учет результатов; анализ совокупности полученных при мониторинге данных.

Выбор питательной среды для проведения микробиологического мониторинга является одним из важных факторов. Питательная среда должна поддерживать рост широкого спектра микроорганизмов, включая дрожжи и грибы. Для стандартизации проводимых исследований в последние годы применяется стандартный набор питательных сред: МПА, ЖСА, агар Сабуро, 1% пептон, Эндо, тиогликолевый бульон.

Приведнные результаты свидетельствуют о важной проблеме во всех подразделениях (поликлиника, клинико-диагностическая лаборатория – КДЛ, стационар) – обнаружение плесневых грибов в воздухе. В первую очередь наиболее важной причиной этого предположительно является работа вентиляционной системы, наиболее слабое место во всех медицинских учреждениях; нельзя сбрасывать со счетов и организацию дезинфекционных мероприятий.

Следует также обратить внимание, что обнаружение плесневых грибов в помещениях клинико-диагностической лаборатории может привести к искажению конечных результатов.

Предложения:

1. В срочном порядке необходимо провести дополнительную полнообъмную дезинфекции помещений.

2. Организовать аттестацию вентиляционных систем по всем зданиям и сооружениям учреждения.

MICROBIOLOGICAL PRODUCTION CONTROL IN MEDICAL

ESTABLISHMENTSETSIALIZIROVANNOM

This work is devoted to the microbial production control in a medical facility.

The findings of the study results suggest an important issue in all departments (clinics, clinicaldiagnostic laboratory - clinical laboratories, hospital) - detection of fungi in the air.

УДК 619:

ЧУМА МЕЛКИХ ЖВАЧНЫХ ЖИВОТНЫХ

Мухаметшин М.А., 3 курс, факультет ветеринарной медицины Научный руководитель: Николаева О.Н., канд. биол. наук, ассистент Чума мелких жвачных – это высококонтагиозная вирусная болезнь овец и коз, протекающая преимущественно остро, характеризующаяся лихорадкой, язвенными поражениями слизистых оболочек ротовой и носовой Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии полостей,конъюнктивитами, геморрагическим гастроэнтеритом, поражением лимфоидной системы и развитием пневмонии. Человек чумой мелких жвачных не болеет.

Согласно ICTV 2009 вирус чумы мелких жвачных (Peste-des-petitsruminants virus) относится к отряду Mononegavirales, семейству Paramyxoviridaе, роду Morbillivirus.

Экономический ущерб, причиняемый болезнью овцеводству и козоводству, велик, так как заболеваемость в первичных очагах болезни может достигать 100%, при высоком уровне летальности. Кроме того, чума мелких жвачных обуславливает возникновение сопутствующих болезней у животных, что определяет высокий уровень экономических потерь.

Анализ эпизоотической ситуации по чуме мелких жвачных в странах мира за последние десять лет показал, что это заболевание овец и коз имеет широкое распространение в Западной и Центральной Африке, Аравийском полуострове и Азии, а в последние годы выявлена тенденция приближения нозоареала к границе РФ [1].

Согласно классификации МЭБ чума мелких жвачных входит в перечень особо опасных болезней. Кроме того, болезнь относится к особо опасным экзотическим болезням, представляющим угрозу заноса в РФ, хотя в настоящее время на территории нашей страны не регистрируется. В России это заболевание может возникнуть на территориях Южного, Приволжского, Сибирского и Дальневосточных Федеральных округов, в которых имеется отгонно-пастбищное животноводство.

Для диагностики чумы мелких жвачных животных предложена ПЦРдиагностика. В настоящее время в неблагополучных зонах по чуме мелких жвачных с целью специфической профилактики широко используют гомологичные вирусвакцины. Предложена вирусвакцина против чумы мелких жвачных из штамма «ВНИИЗЖ» [1].

1. Капускин, Е.В. Качественный анализ риска заноса чумы мелких жвачных на территорию России / Е.В. Капускин // Ветеринарная патология – 2007.

THE PLAGUE OF SMALL RUMINANTS

In this article the problem of a plague of small ruminants is considered. Are described an economic damage, episootology, diagnostics, and also preventive maintenance measures. Threat of drift of illness in our country is shown.

Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии УДК

КЛИНИКО-ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ АСПЕКТЫ

КАЛИЦИВИРУСНОЙ ИНФЕКЦИИ КОШЕК

4 курс, факультет ветеринарной медицины Научный руководитель: к.б.н., ст. преподаватель Журавская Н.П.

Вирусные заболевания кошек очень распространены – владельцы прививают кошек гораздо реже, чем собак. Поэтому проблема диагностики и лечения вирусных инфекций кошек актуальна.

Почти 90 % всех респираторных инфекций у кошек вызывают вирусы, относящиеся к двум семействам: ДНК-содержащих герпесвирусов и РНКсодержащих калицивирусов. Герпесвирусы вызывают инфекционный ринотрахеит (ИРТ), а калицивирусы – калицивироз. Из кишечных вирусных инфекций наиболее часто выявляется панлейкопения [4].

В последние годы в России наблюдается существенный подъем заболеваемости домашних кошек калицивирозом. Он может протекать у животных как в моноварианте, так и в различных ассоциациях с герпесвирусными, хламидийными, микоплазменными и некоторыми другими инфекциями. При отсутствии своевременного и эффективного лечения заболевание в 20% случаев заканчивается летальным исходом [4].

Одной из основных причин возникновения такой ситуации явился возросший интерес к разведению высокопородных животных, сопровождающийся активным их завозом из других регионов Российской Федерации, стран СНГ и мира. Кроме того, немаловажную роль в этом играют нарушения в проведении профилактической вакцинации. Она в большинстве случаев либо отсутствует, либо проводится выборочно. Очень часто не соблюдаются карантинные условия содержания привезенных животных перед их вводом в питомник. Иногда концентрация животных при содержании групповым методом значительно превышает возможности площади помещения. Большую роль также играют различные стрессовые ситуации (перевозки, перегруппировки животных). Все перечисленные факторы способствуют обострению эпизоотической ситуации по калицивирозу у домашних кошек [5].

Калицивирусная инфекция (кальцивироз) – остропротекающая высококонтагиозная болезнь кошек с преимущественным поражением в виде язв ротовой полости и респираторных органов.

Возбудителем инфекции является РНК-содержащий вирус семейства Caliciviridae. Во внешней среде вирус может сохраняться до 7 дней, чувствителен ко многим дезинфицирующим средствам. Установлено более серотипов возбудителя, между собой эти серотипы сильно отличаются своими патогенными качествами [1].

Кальцивирусная инфекция распространена повсеместно. Заболевания поражают всех кошачьих. Болеют все породы кошек (персидская, британская, Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии сфинкс, шотландская вислоухая), а также беспородные, независимо от возраста и половой принадлежности. Наиболее чувствительны молодые и ослабленные животные, животные, содержащиеся в плохих условиях. Чаще всего случаи заболевания калицивирозом регистрируют у котят в возрасте от 1 до 6 месяцев.

При групповом содержании болезнь может значительно распространяться и приобретать характер постоянных энзоотий. Чаще всего кальцивироз регистрируется в холодное время года и в периоды дождей [5].

Источником инфекции являются больные животные и вирусоносители, которые выделяют вирус в течение нескольких месяцев после заболевания.

Вирус передается от больного животного через слюну и слезные секреты, фекалии и мочу, через предметы ухода. В организм проникает алиментарно или аэрогенно. В слизистых оболочках трахеи и конъюнктивы происходит размножение вируса [2].

Естественный путь заражения вирусом калицивироза является контактным через назальные, оральные и конъюнктивальные выделения больных животных. Размножение вируса происходит в ротовой полости и тканях верхних дыхательных путей, однако некоторые штаммы имеют предрасположенность к размножению в легких. Наиболее характерные признаки данного заболевания – язвы неба и языка, сначала образуются пузырьки, которые лопаются, на их месте развивается некроз ниже лежащей эпителиальной ткани, инфильтрация нейтрофилов по периферии и в основании язвы.

Вирусоносительство длится в среднем от 30 до 75 дней после заражения.

Носители калицивирусной инфекции характеризуются постоянным выделением вируса во внешнюю среду [3].

Симптомы. Инкубационный период может быть достаточно длительным – до 10 дней. Симптомы значительно варьируют. Основные признаки заболевания – повышение температуры тела в первые 3-4 дня болезни может до 40 – 40,5 °С, носовые и глазные выделения серозного характера, чихание, кашель, угнетение, анорексия. Характерным, иногда единственным симптомом являются изъязвления в полости рта. Язвы могут быть на языке, твердом небе, губах, в ноздрях, особенно в средней щели ноздрей. При этом наблюдают обильную саливацию. На более поздних стадиях болезни у кошек могут регистрироваться катаральный трахеит, бронхит, пневмония. В редких случаях, и обычно у молодых котят, острые респираторные инфекции могут заканчиваться гибелью животного. Некоторые штаммы вируса могут вызывать у животных поражения конечностей, клинически проявляющиеся в виде хромоты. Этот факт подтвержден экспериментально [5].

Диагностика заболевания основана на анализе эпизоотологических и клинических данных, а также результатов лабораторных исследований. Вирус выделяют в культуре клеток почки котенка и дифференцируют в РН с применением иммунофлюоресцентного метода. Для диагностики болезни используют также парные сыворотки, взятые с интервалом в 14 дней, которые исследуют в РН. В сомнительных случаях ставят биопробу. При этом зараженные котята погибают через 20 дней.

Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии При дифференциальной диагностике следует учитывать определенное сходство клинического проявления калицивироза с герпесвирусной инфекцией, хламидиозом, панлейкопенией и стоматитами различной этиологии [3].

Лечение. Улучшают условия содержания и обеспечивают животное противовоспалительную (полусинтетические пенициллины: ампициллин, оксациллин и т.п.) и десенсибилизирующую терапию [5].

Неспецифическое, стимулирующее воздействие на кошек оказывает цианокобаламин (витамин В 12) в дозе 250-500 мг на голову в сутки подкожно или внутримышечно. Применяют совместно с дренажными муколитическими (ацетилцистеин, ферменты-химотрипсин) и отхаркивающими средствами (пертусин, натрия бензоат).

Ротовую полость орошают антисептиками. При необходимости назначают глазные капли «Декта-2» или другие. Если животное не принимает пищу, то внутривенно или подкожно вводят изотонические солевые растворы (раствор Рингера-Локка), раствор 5% глюкозы, Аминовит (Гамавит) или Витаминол, а также витамины А и С 1 - 2 раза в день. Эффективны также клизмы с перечисленными растворами в объеме 20-100 мл. Их ставят 3-4 раза в день.

Применяют специфические биопрепараты: «Витафел» – специфический иммуноглобулин против панлейкопении, калицивироза и ринотрахеита, «Витафел-С» – поливалентная сыворотка против панлейкопении, калицивироза и ринотрахеита. Можно применять иммуномодуляторы Циклоферон, Камедон, Фоспренил, Максидин.

Животным, склонным к аллергическим реакциям, следует применять антигистаминные препараты.

При гнойных выделениях из глаз и ноздрей проводят дезинфекцию этих органов растворами фурацилина, фуразолидона, борной кислоты [3].

Профилактику калицивирусной инфекции можно разделить на две части.

Первое – мероприятия, общие для борьбы со всеми инфекционными заболеваниями: полноценное кормление животных, соблюдение санитарных норм их содержания, своевременное проведение дегельминтизации и борьба с эктопаразитами, исключение контакта с бродячими животными.

К специфической профилактике относится вакцинация. Для этого предлагаются вакцины Мультифел - 3 против панлейкопении, ринотрахеита, калицивирусной инфекции кошек, Мультифел-4 против панлейкопении, ринотрахеита, калицивирусной инфекции и хламидиоза кошек.

Вакцинации подлежат здоровые животные. За 5-7 дней до предполагаемой прививки необходимо провести дегельминтизацию (предлагаются антгельминтики Альбен С, Фебтал, Поливеркан, Дронтал для кошек). Котят первый раз прививают в возрасте 8 – 12 недель, повторно через 21 – 28 дней.

Вакцину вводят подкожно в области лопатки котятам до 6 месячного возраста в дозе 0,5 см3, старше – 1 см3 независимо от массы тела и породы кошек. Взрослые кошки прививаются однократно ежегодно. Взрослым Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии животным, ранее не прививавшимся, вакцину вводят дважды с интервалом 21 – 28 дней, а в дальнейшем один раз в году [1].

Иммунитет у привитых животных наступает через 14 дней после второй иммунизации и сохраняется в течение 1 года. Вакцину, не использованную в течение 2-х часов после вскрытия флакона (ампулы), обезвреживают кипячением [3].

Максимов Н.А., Лебедько С.И. Инфекционные болезни собак и кошек / Рэмси Я. Инфекционные болезни собак и кошек / 2003. С. 302.

Санин А.В. Калицивирусная инфекция. – Ветеринарная клиника. – 4. http://www.micro-plus.ru 5. http://webmvc.com

CLINICAL AND EPIZOOTOLOGICAL ASPECTS

CALICI INFECTION OF CATS

Zhuravskaya N.P., Gurjanova P.S., Sadrtdinova J.M.

This article contains the most complete information about calici infection of cats.

УДК 619:

ДИАГНОСТИКА, ПРОФИЛАКТИКА И ЛИКВИДАЦИЯ

ИНФЕКЦИОННЫХ БОЛЕЗНЕЙ МОРСКИХ АКВАРИУМНЫХ РЫБ

Порфирьева А.В., 4 курс, факультет ветеринарной медицины Научный руководитель: к.б.н., ст. преподаватель Журавская Н.П.

К основным факторам возникновения инфекционного процесса в организме рыб можно отнести: наличие возбудителя инфекции, обладающего определенной вирулентностью; восприимчивость к данной инфекции;

благоприятные условия внешней среды, при которых может возникнуть инфекционное заболевание.

Проведенные исследования ряда ученых позволили установить, что среди инфекционных заболеваний морских рыб особенно распространены вирусные.

Опасной является и секундарная бактериальная инфекция, которая может сильно осложнять основное заболевание [1, 5].

Среди вирусных инфекций наиболее часто отмечают вирусный некроз эритроцитов и лимфоцистис.

Вирусный некроз эритроцитов - это заболевание известно как болезнь целого ряда промысловых и искусственно выращиваемых морских рыб.

Заболевание встречается у груперов (Cephalopholis miniatus) и крылаток (Pteros volitans) [1, 2].

Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии Возбудителем данного заболевания является вирус, который может передаваться через икру, контактным способом и при питании. Оптимальная температура воды для развития возбудителя этого заболевания составляет 22- Диагноз на наличие у рыб этого заболевания ставится на основании клинических, патологоанатомических исследований и на основании нахождения включений в клетках крови. Эти данные должны подтверждаться вирусологическими исследованиями, т.к. в клетках крови могут быть и гемоспоридии (кокцидии), которых также обнаруживают в эритроцитах.

Основными признаками заболевания являются: подъем рыб к поверхности воды, слабая реакция на попытку вылова, нахождение рыб около распылителей воздуха, отказ от корма, побледнение окраски тела, анемия жаберной ткани, жаберные крышки расставлены, дыхательные движения учащены. На поверхности тела в области брюшка – мелкие точечные кровоизлияния, брюшко немного ассиметрично увеличено.

Проявлению и распространению этого заболевания способствуют ухудшение физиологического состояния рыб за счет стрессов от перевозки и наличия химических загрязнений. Способов борьбы с данным заболеванием в литературе не отмечено. Рекомендуется карантинизация рыб, испытывающих недостаток кислорода и имеющих бледную окраску тела, в течение 20 суток [1].

Лимфоцистис – высококонтагиозное заболевание морских и пресноводных рыб, особенно окунеобразных, в том числе цихлид. Наиболее часто встречается у рыб Средиземноморья, Красного моря и морей ЮгоВосточной Азии.

Возбудителем является ДНК-содержащий иридовирус, паразитирующий в цитоплазме соединительнотканных клеток. Вирусоносительство наблюдается у рыб с нормальным физиологическим статусом [4].

Заболевание развивается после стрессов, при воздействии солей тяжелых металлов, нефтепродуктов и пестицидов, питании рыб неполноценным или токсичным (содержащим высокое перекисное число) кормом.

Основные признаки инфекции: поведение рыб не меняется. Больная рыба продолжает питаться, на поверхности тела и плавниках появляются узелки до мм в диаметре, превращающиеся в гроздевидные скопления, похожие на ягоду малину. Вокруг этих опухолеобразных разрастаний могут появляться воспаления. При микроскопическом исследовании этих разрастаний наблюдаются овальные клетки с сильно увеличенным ядром. Снаружи клетки окружены хорошо видимой прозрачной оболочкой.

Гибель рыб не наблюдается, несмотря на то, что поражение может охватить более 2/3 поверхности тела. У рыбы замедляется рост. Со временем опухолеподобные разрастания разрушаются, рыба выздоравливает, но становится носителем вируса. В условиях аквариума это заболевание проявляется при несоответствии условия содержания данного вида рыбы, ухудшения физиологического состояния. Рыба приобретает нетоварный вид.

Улучшение состояния рыб наблюдается при повышении температуры до 27 С и создания оптимальных условий содержания. Больную рыбу изолируют, Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии а рыб, контактировавших с больной рыбой, следует считать носителями. Для лечения применяется оксалин: 1 кубик 0,2%-ного раствора на 100 г корма в течение 10-15 дней.

Всех возбудителей бактериальных болезней рыб можно разделить на две группы: облигатные, которые, попав в аквариум, при любых условиях обязательно вызовут заболевание, и условно патогенные, которые могут присутствовать в аквариуме, присутствуют на рыбах, гидробионтах, в воде, но вызывают заболевание только при определенных условиях. С последней группой возбудителей болезней рыб мы встречаемся чаще всего. К сожалению, именно заболевания, вызванные условно патогенными бактериями, лечатся тяжелее всего, т.к. эти виды чаще всего обладают повышенной способностью быстро привыкать к применяемым препаратам.

Фурункулез – встречается у пресноводных (золотые рыбки, кои, цихлиды и др.) и морских рыб. Является облигатным возбудителем заболеваний.

Возбудителем заболевания является бактерия Aeromonas salmonicida – неподвижная, короткая, грамотрицательная палочка, образующая на питательных средах коричневый пигмент. Палочки, не образующие коричневый пигмент, являются условно патогенными штаммами.

Передача возбудителя происходит через зараженную рыбу, корма, воду, предметы ухода, растения, грунт, корма.

Через 1 сутки после заражения рыба погибает без клинических признаков. Рыба вялая, собирается в местах, где отсутствует течение, прячется, перестает питаться, брюшко вздувается, наблюдается двухстороннее пучеглазие, ерошение чешуи, фурункулы под кожей. Обычно язвы вскрываются и наружу выделяются некротизированные части тканей.

При острой форме никакое лечение не дает положительного эффекта.

При подострой и хронической форме применяются с кормом левомицетин (0,75г/1200 г веса корма) в течение 10-12 дней, ванны (1г/10 л воды) в течение 10-12 дней; с кормом неомицин (0,5 г) + фуразолидон (0,1 г); с кормом ципрофлоксацин (0,25 г) + метранидозол (0,5 г) в течение 10-12 дней [3, 5].

Аэромоноз - встречается у всех видов пресноводных и морских рыб.

Возбудители аэромоноза – Aeromonas cavia, A. gidrophila, A. media, A.sobria и др. – являются обычными компонентами пресных и соленых вод, грамотрицательные бактерии, с одним жгутиком, спор и капсул не образуют.

Делятся на три группы: высоковирулентные (облигатные патогены), вызывающие заболевание при любом состоянии аквариума и рыб, штаммы с индуцированной вирулентностью, вызывающие заболевание под воздействием ухудшения состояния среды или при ухудшении физиологического состояния рыб, и не вирулентные формы.

При этом заболевании рыбы теряют яркость окраски, чешутся, ведут себя беспокойно, увеличивается число дыхательных движений, держатся у поверхности воды, слабо принимают корм или отказываются от него, проявляют беспокойство. Наружные признаки – повышенное ослизнение покровов, их покраснение, одиночные кровоизлияния под кожей, увеличение брюшка, двухстороннее пучеглазие, локальное ерошение чешуи, воспаление Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии основания плавников, серповидное или кольцеобразное кровоизлияние вокруг хрусталика глаза, бывает язвенное поражение покровов (язвы красноватого цвета) [2, 5].

Способы борьбы: устранение причин, вызывающих заболевание (снятие стресса), установление оптимального гидрохимического режима, улучшение физиологического статуса рыб. Для борьбы с возбудителем применяют вакцины ВЮС-2.

Псевдомоноз – распространен в пресных и морских водах повсеместно.

Возбудители – Pseudomonas aureofaciens, P. anguieliseptica, P. fleuorescens, P.

putida cyprinisepticus.

Многие виды псевдомонад являются постоянными компонентами бактериоциноза аквариума так же, как и условно патогенные аэромонады.

Возникновение псевдомонозов чаще всего связано с ухудшением санитарного состояния аквариума или ухудшением физиологического состояния рыб. Среди признаков заболевания следует отметить: вялость рыб, бледность окраски, ослабление аппетита, повышенную пугливость, попытки прятаться. На концах плавников появляется белая каемка, мягкие ткани между лучами некротизируются. В более тяжелых случаях наблюдаются увеличение брюшка, покраснение основания плавников, серповидные кровоизлияния в глазах. На поверхности тела - язвы серого цвета с красным ободком, а также серо-белые волнистые слизистые наложения. Жабры анемичные, серо-белые. Рыба поднимается к поверхности воды, испытывает недостаток кислорода, учащенно дышит, беспокойно плавая у поверхности воды.

Заболевание возникает при ухудшении физиологического состояния рыб, нарушении кормления (несбалансированность корма), содержании рыб при пониженной температуре, повышении содержания в воде органики, попадании агрессивной формы псевдомонад.

Для борьбы с инфекцией улучшают условия содержания рыб. Применяют ванны:

- при тяжелой форме болезни - ципрофлоксоцин (0,5 г) + метронидозол (0,5 г) + фурацилин (0,1 г) на 10 л воды в течение 2-3 часов в течение 6-12 дней;

при начале заболевания - фурацилин (0,2 г на 5 л воды) – 2 часа через день (в промежутках ванны с метиленовой синькой – 0,01 г на 1 л воды в течение часов); бисептол 480 - 0,5 г на 40 литров воды из аквариума, экспозиция 4- часов с постоянной аэрацией в течение 6-10 суток [2, 4].

Микобактериоз (туберкулез рыб) – болезнь распространена среди видов рыб, особенно морских. Возбудители: Mycobacterium piscium, M.

marinum, M. platypoecilus, M. anabanti, M. fortuitum, M. balnei. M. marinum – грамположительная, неподвижная палочка длиной 4 мкм.

Заражение происходит алиментарно от рыб-носителей, с кормом. В первую очередь поражается ослабленная рыба. Заболевание возникает при заносе в аквариум возбудителя с рыбой, кормами, предметами ухода, водой, грунтом и др. Существует мнение, что M. marinum может заражать людей и теплокровных животных с образованием на месте внедрения папулообразных нарывов на коже.

Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии Основные признаки заболевания – больная рыба отстает в росте, становится вялой, плавает толчками. Не может удержаться в толще воды (тонет, «ползун»). У спокойно плывущей рыбы вываливается чешуя, на месте выпавшей чешуйки не наблюдается покраснения или какого-либо другого изменения. У рыб уменьшается яркость окраски. Наблюдается деформация и некроз челюстей, искривление позвоночника, задержка роста, одностороннее пучеглазие, брюшко подтягивается, жабры бледные. Рыба выглядит светлоокрашенной. На коже локальные красные папулы, ссадины, царапины. У половозрелых рыб – отсутствие вторичных половых признаков.

Способы борьбы: рыб с сильно подтянутым брюшком, высохших (с сильным истощением), деформацией позвоночника, «тонущих» следует выбраковывать. Рыб, отстающих в росте, имеющих бледную окраску, подвергать лечению. Для лечения применяют канамицин с кормом (0,1 г на г корма) 10-13 дней с последующим повторением через 10 суток [2, 5].

Стрептококкоз – распространен у морских рыб и морских аквариумных рыб. Возбудители: Streptococcus milleri, S. difficile – грамположительные, попарно и цепочкой соединенные круглые бактерии. Заболевание возникает при заносе инфицированной рыбы, гидробионтов (креветки), червей, морских звезд, моллюсков.

Признаки заболевания: пораженная рыба продолжает питаться и активно плавать. У нее наблюдается одностороннее пучеглазие с кровоизлиянием в глаз, разрастанием соединительной ткани вокруг глаза так, что глазное яблоко вытесняется из орбиты. Пораженный глаз может висеть вне орбиты, соединяясь с головой нервным и кровеносными стволами. Глаз может полностью выпадать.

В ряде случаев наблюдается разрыв конъюнктивы, прободение роговицы, выпадение хрусталика. Наблюдается анемия жабр, покраснение ротовой полости и образование гнойных пузырьков в ротовой полости и во внутренней части жаберной крышки. У рыбы наблюдается потемнение окраски тела и пугливость. Анальное отверстие воспаляется и выпячивается.

Для лечения применяется культура ацидофилина с кормом – 10 дней, эритромицин (0,2 г/100 г корма) в течение 10-16 дней [2].

1. Телегин А.В., Судариков А.Ю., Опаленко М.А. Обзор рыб семейства Chaetodontidae - Щетинозубые (рыбы-бабочки) с точки зрения требований к условиям содержания в неволе.

2. Юнчис О.Н. Инфекционные болезни морских аквариумных рыб 3. Енгашев В.Г. Разработка новых лекарственных средств для рыб.

4. http://www.salmo.ru

DIAGNOSIS, PREVENTION AND ELIMINATION OF

COMMUNICABLE DISEASES OF MARINE AQUARIUM FISH

This article contains information about some of the infectious diseases of marine aquarium fish.

Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии УДК

БИОЛОГИЧЕСКАЯ ОПАСНОСТЬ СИБИРЕЯЗВЕННЫХ

СКОТОМОГИЛЬНИКОВ

Рванина М.С., 4 курс, факультет ветеринарной медицины Научный руководитель: к.б.н., ст. преподаватель Журавская Н.П.

Проблема биологической опасности сибиреязвенных скотомогильников и отдельных захоронений сибиреязвенных трупов животных актуальна не только в РФ и странах СНГ, но и в большинстве развитых и развивающихся стран мира. Она возникла не сегодня, а существует уже не одну сотню лет и напрямую связана с биологической особенностью возбудителя сибирской язвы (Bacillus anthracis) образовывать споровую форму бацилл, устойчивую к воздействию многих физических, химических и биологических факторов [2].

Сибирская язва – острая инфекционная болезнь животных и человека, характеризующаяся тяжлой интоксикацией, лихорадкой, поражением кишечника, лгких, миндалин. Очагами болезни считаются места захоронения трупов животных, павших от сибирской язвы. Споры сибирской язвы сохраняются в почве от нескольких десятков до нескольких сотен лет [1].

Чрезвычайно высокая устойчивость сибиреязвенных спор является основной причиной формирования почвенных очагов сибирской язвы. Везде, где животные погибали от сибирской язвы и (или) производились захоронения, а порой и сжигание сибиреязвенных трупов, происходило обсеменение почвы сибиреязвенными спорами и, следовательно, формировался почвенный очаг сибирской язвы. Сейчас, когда человечество избавилось от опустошительных эпидемий и эпизоотий сибирской язвы благодаря достижениям иммунологов и санитарным мерам, эта болезнь носит, главным образом, спорадический характер. Отдельные случаи заболевания животных связаны исключительно с почвенными очагами сибирской язвы, в которых сохраняются живые споры возбудителя болезни. Работы по санации сибиреязвенных очагов и их переносу проводились с различной эффективностью на протяжении всего двадцатого века, однако решить эту проблему в глобальном масштабе, либо в масштабах нашей страны пока не удалось. Проблемы и трудности решения этого вопроса в России неоднократно освещались на международных и Всероссийских научных конференциях и в открытой печати [2].

Сибирскую язву не зря считают опаснейшей болезнью: во время ухода за больными животными, при обработке заражнного мяса ею может заразиться человек. Если сибирская язва поражает кожные покровы, тело человека покрывается страшными язвами, но если инфекция проникает и во внутренние органы – тогда летальный исход почти неизбежен.

Надо сказать, что с сибирской язвой давно и успешно борются: на федеральном уровне утверждн комплекс мер в случае инфицирования животных и людей, есть вакцина. Но язва не сдатся. В 2008 году было зафиксировано 24 случая заболевания людей – в Башкирии, Бурятии, Астраханской области и Дагестане, тогда как в 2007 году случаев заражения Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии было всего три. И хотя Ульяновской области в этом списке нет, как говорится, рано радоваться [3].

В 100 % случаев люди заражаются сибирской язвой через животных, которые подцепили бациллу из почвы на выпасе рядом со скотомогильниками, с которыми в Ульяновской области как раз не вс благополучно. Например, всего в 250 метрах от районного послка Николаевка находится место, где в 1959 году были захоронены трупы животных, заразившихся сибирской язвой.

Назвать это скотомогильником нельзя, потому что это всего лишь курган высотой около 3-х метров. Всего же в Ульяновской области по данным Департамента Ветеринарии насчитывается 347 простых скотомогильников (так называемых ям Беккари), из них, по разным данным, от 37-ми до 39-ти – сибиреязвенные (Вешкаймский р-н -1, Инзенский р-н -4, Карсунский р-н -4, Кузоватовский р-н -4, Николаевский р-н -1, Новомалыклинский р-н -6 и др.) [4].

Более четверти из всех мест захоронений биологических отходов никому не принадлежат, а значит, никто не отвечает за их состояние, так как во-первых, некоторые бесхозные скотомогильники очень древние. До сих пор обнаруживаются братские могилы домашней скотины, датируемые 19-м веком.

А во-вторых, бесхозные ямы Беккари достаются жителям населнных пунктов от разорившихся сельхозпредприятий.

Но сказать, что совсем никаких мер не предпринимается, было бы неправдой. Несколько лет назад в нашем регионе была принята целевая программа «По обеспечению безопасности сибиреязвенных скотомогильников в Ульяновской области», рассчитанная на 2009-2010 годы. По планам, уже в том же году должны были начаться работы по консервации 35 сибиреязвенных скотомогильников, однако из-за кризиса средства урезали более чем вдвое, а это значит, что сибирская язва продолжает ждать своего часа.

Последний случай заболевания сибирской язвой был зафиксирован в Ульяновской области 7 лет назад. В январе 2004 года в Сенгилее от этой болезни пал семимесячный пороснок. Причиной заражения стал необустроенный скотомогильник вблизи свинарника, где пороснок рыл землю.

Тогда всем животным, содержащимся рядом с больным, и их хозяевам сделали прививки, а сарай, где содержалось животное, сожгли. В тот раз экстренные меры были приняты своевременно. А вот в 1997 году сибирской язвой успели заразиться 5 жителей послка Абдреево в Новомалыклинском районе [3].

В настоящее время действующими законодательными актами предусмотрены работы по санации сибиреязвенных скотомогильников с использованием высокоэффективных дезинфектантов и их переносу на безопасные для людей и животных места. Необходимо также принять соответствующие меры по предупреждению распространения возбудителя во внешней среде, купированию перемещенного грунта с сибиреязвенного скотомогильника и дальнейшему хозяйственному использованию освобожденных площадей [2].

Кто даст гарантию, что на этом сибирская язва остановится? Ведь всеобщая бесхозность была благодатной почвой для эпидемий во все времена.

Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии 1. Конопаткин А.А. Эпизоотология и инфекционные болезни.М.:Колос, 2. http://velt-media.ru 3. http://ulpressa.ru 4. http://wwwgosecocontrol.ru

BIOLOGICAL HAZARDS ANTHRAX CATTLE CEMETERY

The paper presents data on the graves of animals killed by anthrax. Emphasizes their biological hazard to humans and animals.

УДК 619:616-

ГУБЧАТАЯ ЭНЦЕФАЛОПАТИЯ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА

Афанасьева Е.М., Федоровский А.Д., факультет ветеринарной медицины Прионы (от англ. proteinaceous infectious particles – белковые заразные частицы) – особый класс инфекционных агентов, чисто-белковых, не содержащих нуклеиновых кислот, вызывающих тяжлые заболевания центральной нервной системы у человека и ряда высших животных (так называемые «медленные инфекции»). Прионный белок, обладающий аномальной трхмерной структурой, способен прямо катализировать структурное превращение гомологичного ему нормального клеточного белка в себе подобный (прионный), присоединяясь к белку-мишени и изменяя его конформацию. Как правило, прионное состояние белка характеризуется переходом -спиралей белка в -слои. Прионы – единственные инфекционные агенты, размножение которых происходит без участия нуклеиновых кислот.Губкообразная энцефалопатия крупного рогатого скота, ГЭКРС, коровье бешенство (англ. Bovine spongiform encephalopathy (BSE), англ. Mad-cow disease) – нейродегенеративная прионная болезнь, приводящая к необратимым, летальным изменениям в головном мозге зараженных животных. Вызывается прионом ГЭКРС (BovPrPSc, PrPbse). Инкубационный период от 30 месяцев до лет. Передается при употреблении в пищу мяса больных животных, вызывает скрейпи у овец и болезнь Крейцфельда-Якоба (новый вариант, vCJD, nvCJD) у людей. Впервые было зафиксировано в Великобритании в 1986 году. С конца 1980-х коровье бешенство было обнаружено у более чем 179 тыс. голов крупного рогатого скота в Великобритании. Также болезнь обнаружена у сотен коров в Ирландии, Франции, Португалии, Швейцарии, Испании, Германии.

Регистрируются единичные случаи в других странах. Считается, что эпизоотия была вызвана скармливанием скоту мясокостной муки, изготовленной из останков «инфицированных» животных, в частности, овец. Было выявлено более двух сотен смертей людей (на февраль 2009) от нового варианта болезни Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии Крейцфельда-Якоба. Особенностью возбудителя ГЭ КРС являются его очень малые размеры (м.м. 28-30 KD) и высокая устойчивость к химическим и физическим факторам. В ткани мозга и селезенке белки PrP27-32 KD полимеризуясь образует специфичные скрепи-ассоциированные фибриллы (САФ-фибриллы). Возбудитель представлен только белком без нуклеиновой кислоты и поэтому выдерживает кипячение, многократное замораживание и оттаивание, не гибнет в течение 30 минут при 115 °С, в течение 1 часа при 90°С, инактивируется автоклавированием (18 минут при 134-138 °С или при том же режиме 6 циклов по 3 минуты). Возбудители выдерживают несколько месяцев воздействие 12%-ного формалина и рН от 2 до 10,5. В 20%-ном растворе формалина инфекционность не утрачивается 18 часов при 37 °С.

Губкообразная энцефалопатия крупного рогатого скота была впервые обнаружена в Англии в ноябре 1986 г. Губкообразная энцефалопатия крупного рогатого скота в последние годы подтверждена в различных странах мира – Англии, Франции, Дании, Германии, Канаде, Омане, Португалии, Швейцарии, Польше и других странах мира. В Республике Беларусь данное заболевание не зарегистрировано. Однако опасность его заноса имеется. Инкубационный период при губкообразной энцефалопатии крупного рогатого скота составляет от 3 до 8 лет. Первые симптомы обычно появляются в возрасте от 4 до 5 лет, постепенно усиливаясь в течение 1-4 месяцев. Продолжительность заболевания варьирует от 2 недель до 1 года и более. У животных наблюдаются изменения в поведении, чаще всего сходные со страхом, нервозностью, скрежет зубами, беспокойство, боязливость, стремление отделиться от стада, возбудимость, дрожание отдельных участков тела, частые движения ушами, облизывание носа, почесывание головы ногой, но без выраженного зуда. Также отмечается изменение чувствительности, которая проявляется в различных видах, но чаще всего речь идет о гиперчувствительности при прикосновении, действии шума и света.Установление диагноза на ГЭ КРС включает: изучение клинических признаков, проведение патогистологических исследований, проведение иммунохимических исследований (иммуноблотинг, иммуноферментный анализ, иммунофлюоресцентный анализ), биопроба на лабораторных животных.

Для диагностики используют продолговатый мозг крупного рогатого скота после исследования на бешенство и другие вирусные инфекции после неподтверждения диагноза или мозг крупного рогатого скота старше 3-х лет.Губкообразную энцефалопатию крупного рогатого скота необходимо дифференцировать от бешенства, листериоза, болезни Ауески, нервной формы инфекционного ринотрахеита, злокачественной катаральной горячки, а также отравлений фосфорорганическими, хлорорганическими, ртутьорганическими соединениями, фосфидом цинка, мышьяком, поваренной солью. Лечение при губкообразной энцефалопатии не разработано. Применяется методы симптоматической терапии, разработанные при заболеваниях центральной нервной системы. Средств специфической профилактики губкообразной энцефалопатии нет. Основные меры борьбы направлены на изоляцию подозрительных животных, недопущение завоза в хозяйство или на ферму Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии животных из неблагополучных хозяйств и стран, недопущение скармливания мясной или мясокостной муки от жвачных животных. Меры борьбы проводят в соответствии с «Инструкцией по мерам профилактики и борьбы с губкообразной энцефалопатией крупного рогатого скота».

Покровский В.И., Киселев О.И., Черкасский Б.Л. Прионы и прионные болезни. – М.:РАМН, 2004, 384 с.

2. Bovine Spongiform Encephalopaphy: An Overview (PDF). Animal and Plant Health Inspection Service, United States Department of Agriculture (December Richt JA, Hall SM (2008). «BSE case associated with prion protein gene DOI:10.1371/journal.ppat.1000156. PMID 18787697.

Mad cow disease. Информация о коровьем бешенстве / Center for Global

SPONGIFORM ENCEPHALOPATHY IN CATTLE

The study of prion infection on the example of spongiform encephalopathy in cattle.

УДК 619:616-

ПРОБЛЕМА АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ

Степанова Л.К., Нестерчук В.С., Данилова А.И., Руководитель: к.б.н. доцент Молофеева Н.И.

Африканская чума свиней (лат. Pestis africana suum) - это острая высококонтагиозная болезнь, характеризующаяся септицемией. Болеют свиньи всех возрастов и пород в любое время года. Болезнь быстро принимает размеры эпизоотии и панзоотии и наносит свиноводству огромный экономический ущерб. Смертельность при этой болезни достигает 100%.



Pages:     | 1 |   ...   | 4 | 5 || 7 |
Похожие работы:

«Материалы международной научно-практической конференции (СтГАУ,21.11.2012-29.01.2013 г.) 75 УДК 619:616.995.1:136.597 КОНСТРУИРОВАНИЕ ПИТАТЕЛЬНЫХ СРЕД ДЛЯ ВЫДЕЛЕНИЯ И ИНДИКАЦИИ БАКТЕРИЙ РОДА AEROMONAS Н.Г. КУКЛИНА, И.Г. ГОРШКОВ, Д.А. ВИКТОРОВ, Д.А. ВАСИЛЬЕВ Ключевые слова: Aeromonas, выделение, индикация, питательные среды, микробиология, биотехнология, аэромоноз. Авторами публикации сконструированы две новые питательные среды для выделения и идентификации бактерий рода Aeromonas: жидкая...»

«Российская Академия Наук Институт географии РАН Геологический институт РАН Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова Палинологическая комиссия России Комиссия по эволюционной географии Международного географического Союза Палинологическая школа-конференция с международным участием МЕТОДЫ ПАЛЕОЭКОЛОГИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ (Москва, 16-19 апреля 2014) Тезисы докладов International Palynological Summer School METHODS OF PALAEOENVIRONMENTAL RESEARCHES (Moscow, April, 16-19, 2014) Book...»

«ФОРМА ЗАЯВКИ ПРЕДСТАВЛЕНИЕ МАТЕРИАЛОВ Министерство природных ресурсов и экологии на участие в конференции: Заявки и материалы, объемом до 5 страниц Российской Федерации (включая таблицы, рисунки и библиографический Фамилия Управление Федеральной службы список), принимаются в печатном и электронном по надзору в сфере природопользования виде до 12 мая 2014 г. по Кировской области Имя Федеральное государственное бюджетное Электронный вариант: стандартный формат Word учреждение Государственный...»

«Московский государственный университет им. М.В.Ломоносова Студенческий союз МГУ Биологический факультет ТЕЗИСЫ ДОКЛАДОВ XIII МЕЖДУНАРОДНОЙ КОНФЕРЕНЦИИ СТУДЕНТОВ, АСПИРАНТОВ И МОЛОДЫХ УЧЕНЫХ ЛОМОНОСОВ-2006 12–15 апреля 2006 г. Секция Биология Москва – 2006 УДК 57 Председатель оргкомитета секции Биология Проф. Гостимский С.А. Члены оргкомитета: С.н.с. Ботвинко И.В. Проф. Максимов Г.В. Доц. Медведева М.В. Проф. Соколов Д.Д. Проф. Онищенко Г.Е. С.н.с. Авилова К.В. Ст. преп. Сергеев И.Ю. Доц....»

«Отделение биологических наук РАН Научный Совет по гидробиологии и ихтиологии РАН Российский фонд фундаментальных исследований Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования Тюменский государственный университет МАТЕРИАЛЫ ВСЕРОССИЙСКОЙ КОНФЕРЕНЦИИ С МЕЖДУНАРОДНЫМ УЧАСТИЕМ Борок 2012 Отделение биологических наук...»

«Институт биологии Коми НЦ УрО РАН РЕГИСТРАЦИОННАЯ ФОРМА КЛЮЧЕВЫЕ ДАТЫ Коми отделение РБО Заявка на участие и тезисы докладов в электронном виде 1.02.2013 Министерство природных ресурсов и охраны Фамилия Второе информационное письмо 1.03.2013 окружающей среды Республики Коми Оплата оргвзноса 15.04.2013 Имя Управление Росприроднадзора по Республике Коми Регистрация участников Отчество и открытие конференции 3.06. ФИО соавтора (соавторов) Представление материалов БИОРАЗНООБРАЗИЕ ЭКОСИСТЕМ для...»

«Уважаемые коллеги! Миркин Б.М., д.б.н., профессор, Башкирский Оргкомитет планирует опубликовать научные гос. университет материалы конференции к началу ее работы. Приглашаем Вас принять участие в работе П е н ч у ко в В. М., а к а д е м и к РАСХ Н, Для участия в работе конференции Международной научной конференции необходимо до 1 февраля 2010 года Ставропольский гос. аграрный университет Теоретические и прикладные проблемы П е т р о в а Л. Н., а к а д е м и к РА С Х Н, н ап р а в и т ь...»

«16.11.2013 (суббота) Регистрация, кофе, плюшки 8:30-9:30 Открытие конференции 9:30-10:30 Проректор по обеспечению реализации образовательных программ и осуществления научной деятельности по направлениям география, геология, геоэкология и почвоведение СПбГУ С.В. Аплонов Декан факультета географии и геоэкологии Н.В. Каледин Зав. кафедры гидрологии суши Г.В. Пряхина ООО НПО Гидротехпроект А.Ю. Виноградов Организационный Комитет Л.С. Лебедева Посвящение Ю.Б. Виноградову 10:30-11:00 Т.А. Виноградова...»

«Международная научно-практическая конференция МЕДИЦИНСКИЕ НАУКИ: ПРОШЛОЕ, НАСТОЯЩЕЕ И БУДУЩЕЕ 26 МАЯ 2014Г. Г. УФА, РФ ИНФОРМАЦИЯ О КОНФЕРЕНЦИИ ОСНОВНЫЕ НАПРАВЛЕНИЯ КОНФЕРЕНЦИИ Цель конференции: поиск решений по актуальным проблемам современной наук и и Клиническая медицина. 1. распространение научных теоретических и практических знаний среди ученых, преподавателей, Профилактическая медицина. 2. студентов, аспирантов, докторантов и заинтересованных лиц. Медико-биологические науки. 3. Форма...»

«Российская академия наук Институт озероведения РАН Российский государственный педагогический университет им. А.И. Герцена Гидробиологическое общество РАН II Международная конференция Биоиндикация в мониторинге пресноводных экосистем 10-14 октября 2011г., Санкт-Петербург ТЕЗИСЫ ДОКЛАДОВ II International Conference Bioindication in monitoring of freshwater ecosystems 10-14 October 2011, St.-Petersburg, Russia ABSTRACTS При поддержке: Отделения наук о Земле РАН, СПб Научного Центра РАН, РФФИ...»

«Институт систематики и экологии животных СО РАН Териологическое общество при РАН Новосибирское отделение паразитологического общества при РАН ВСЕРОССИЙСКАЯ НАУЧНАЯ КОНФЕРЕНЦИЯ АКТУАЛЬНЫЕ ПРОБЛЕМЫ СОВРЕМЕННОЙ ТЕРИОЛОГИИ 18–22 сентября 2012 г., Новосибирск Тезисы докладов Новосибирск 2012 УДК 599 ББК 28.6 А43 Конференция организована при поддержке руководства ИСиЭЖ СО РАН и Российского фонда фундаментальных исследований (грант № 12-04-06078-г) Редакционная коллегия: д.б.н. Ю.Н. Литвинов...»

«Ukraine, Russia, Kazakhstan and Turkmenistan, shows its relationship with the 11-year cycle of solar activity, when it peaks occur during periods of sharp increase or decrease in solar activity near the maximum, and minimum - for periods of low solar activity ( fig.) Among the countries of Eastern and Western Europe is characterized by similar dynamics only for Romania. For other countries the situation is not so clear, it is associated with dominance or high-frequency oscillation periods of...»

«РОССИЙСКАЯ АКАДЕМИЯ НАУК Чебоксарский филиал учреждения Российской академии наук Главного ботанического сада им. Н.В. Цицина РАН Чувашское отделение Русского ботанического общества РАН Чувашское отделение Териологического общества РАН МИНИСТЕРСТВО ПРИРОДНЫХ РЕСУРСОВ И ЭКОЛОГИИ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ ФГБУ Государственный природный заповедник Присурский МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ Филиал ГОУ ВПО Российский государственный социальный университет, г. Чебоксары...»

«Международная экологическая ассоциация хранителей реки Eco-TIRAS Образовательный фонд имени Л.С.Берга Eco-TIRAS International Environmental Association of River Keepers Leo Berg Educational Foundation Академику Л.С. Бергу – 135 лет: Сборник научных статей Academician Leo Berg – 135: Collection of Scientific Articles Eco-TIRAS Бендеры - 2011 Bendery - 2011 CZU[91+57]:929=161.1=111 A 38 Descrierea CIP a Camerei Naionale a Crii Academician Leo Berg – 135 years: Collection of Scientific Articles =...»

«НИИЦМиБ ФГБОУ ВПО Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина Кафедра микробиологии, вирусологии, эпизоотологии и ВСЭ Научно-исследовательский инновационный центр микробиологии и биотехнологии АКТУАЛЬНЫЕ ПРОБЛЕМЫ ИНФЕКЦИОННОЙ ПАТОЛОГИИ И БИОТЕХНОЛОГИИ Материалы VI-й Международной студенческой научной конференции, посвящённой 70-летию ФГБОУ ВПО Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина 14 – 15 мая 2013 года Часть I Ульяновск – 2013 Актуальные проблемы инфекционной патологии и биотехнологии НИИЦМиБ ФГБОУ ВПО...»

«Российская академия наук Институт озероведения РАН Биоиндикация в мониторинге пресноводных экосистем II Bioindication in monitoring of freshwater ecosystems II Издательство Любавич Санкт-Петербург 2011 УДК 504.064.36 Ответственные редакторы: Член-корр. РАН В.А. Румянцев, д.б.н. И.С. Трифонова Редакционная коллегия: д.б.н. И.Н. Андроникова, к.б.н. В.П. Беляков, к.б.н. О.А. Павлова, к.б.н. М.А. Рычкова Биоиндикация в мониторинге пресноводных экосистем II. Сборник материалов международной...»

«Учреждение образования Брестский государственный университет имени А.С. Пушкина Мониторинг окружающей среды Сборник материалов II Международной научно-практической конференции Брест, 25–27 сентября 2013 года В двух частях Часть 1 Брест БрГУ имени А.С. Пушкина 2013 2 УДК 502/504:547(07) ББК 20.1 М77 Рекомендовано редакционно-издательским советом учреждения образования Брестский государственный университет имени А.С. Пушкина Рецензенты: доктор геолого-минералогических наук, профессор М.А....»

«В защиту наук и Бюллетень № 8 67 Королва Н.Е. Ботаническую науку – под патронаж РПЦ? (по поводу статьи члена-корреспондента РАН, д.б.н. В.К. Жирова Человек и биологическое разнообразие: православный взгляд на проблему взаимоотношений)119 1. Проблема Проблемы взаимодействия власти и религии, науки и религии, образования и религии требуют современного переосмысления и анализа. Возможен ли синтез научного и религиозного знания, и не вредит ли он науке и научной деятельности, и собственно,...»

«Фундаментальная наук а и технологии - перспективные разработки Fundamental science and technology promising developments III Vol. 2 spc Academic CreateSpace 4900 LaCross Road, North Charleston, SC, USA 29406 2014 Материалы III международной научно-практической конференции Фундаментальная наука и технологии перспективные разработки 24-25 апреля 2014 г. North Charleston, USA Том 2 УДК 4+37+51+53+54+55+57+91+61+159.9+316+62+101+330 ББК 72 ISBN: 978-1499363456 В сборнике собраны материалы докладов...»

«Министтерство о образован и наук Россий ния ки йской Фед дерации Российск академия наук кая к Не еправител льственны эколог ый гический фонд име В.И. В ф ени Вернадско ого Коми иссия Росссийской Федерации по дел ЮНЕ лам ЕСКО Адми инистрация Тамбо овской облласти Ас ссоциация Объеди я иненный универсиитет имен В.И. Ве ни ернадског го Федералльное гос сударствеенное бю юджетное образоваательное учреж ждение выысшего ппрофессиоональног образо го ования Тамбоввский госсударственный теехническ униве...»









 
2014 www.konferenciya.seluk.ru - «Бесплатная электронная библиотека - Конференции, лекции»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.